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骨骼肌细胞培养实验实操步骤分享
来源: | 作者:转载 | 发布时间: 2024-07-01 | 282 次浏览 | 分享到:

在体外条件下对骨骼肌细胞进行培养的实操分享




原理



骨骼肌细胞的培养实验的基本原理是在体外培养时,在培养基中加入胎牛血清并将细胞接种于明胶上,可使肌肉组织中的骨骼肌单核前体细胞在发生增殖的基础上,进一步向成熟骨骼肌细胞发生分化,即细胞间进行大量的融合、细胞内有横纹形成、细胞可发生自发性的收缩等,由此可得到大量的骨骼肌细胞。





材料与仪器



器材:


① 新生 1~2d 的大鼠


② 培养瓶


③ 吸管和胶帽


④ 培养皿


⑤ 解剖剪


⑥ 眼科剪


⑦ 眼科镊


⑧ 无菌的纱网


⑨ 离心机


⑩ 倒置显微镜


⑪ 超净工作台


⑫ CO2 培养箱


⑬ 离心管



试剂:


① D-Hanks 液


② DMEM 培养基(含 10% 胎牛血清)


③ 胶原酶液


④ 0.01% 明胶等。






步骤



骨骼肌细胞的培养实验基本过程可分为以下几步:


一、取材



1. 取新生 1~2 d 的大鼠 1 只,采用脱颈椎法将其处死。



2. 用 70% 的乙醇擦拭大鼠全身 3 遍。


  

3. 在无菌条件下,用解剖剪剪开大腿皮肤,剥去皮毛。



4. 用眼科剪取下大腿肌肉,将其置于盛有 D-Hanks 液的培养皿中。



5. 除去肌肉组织上粘连的脂肪组织,并将肌肉中的骨骼剔除。



6. 将上述肌肉组织用 D-Hanks 液再反复清洗 3 遍,然后置于含用培养基的培养皿中。 


  


二、消化



1. 用眼科剪将肌肉组织剪成大小为 1 mm3 的小块,放入盛有胶原酶液(2000 U/ml)的锥形瓶中,于 37 ℃ 消化 24 h 左右。



2. 吸管用力吹打消化后的肌肉组织块,用无菌的沙网将吹打后残余的组织碎块加以滤过,收集细胞悬液于 10 ml 离心管中。 



3. 800 r/min 离心 5 min,弃上清。



4. 加入含 10% 胎牛血清的培养基,吹打沉淀的细胞,制备细胞悬液。



5. 将细胞接种于覆盖有 0.01% 明胶的培养皿中,接种量可增大到 2 x 106 个细胞/皿。



6. 将培养皿置于 37 ℃ 培养箱中进行培养,4~5 d 后即可得到大量的骨骼肌细胞。















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转载:

http://pro.biomart.cn/lab-web/method/31hnehogo3rsd.html