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原代细胞分离培养实操步骤分享
来源: | 作者:转载 | 发布时间: 2024-05-31 | 255 次浏览 | 分享到:


原理


原代提取目的细胞会混杂着大量的其它细胞,通过不同生物酶的梯度消化、差速贴壁等能够得到纯


度较高的目的细胞群。胶原酶是一种从细菌中提取的酶,对胶原消化作用强,适用于纤维组织及上皮组织的消化,其中胶原酶 I 和分散酶 II 消化结肠组织时可以使细胞间质的脯氨酸多肽水解,达到分散细胞,而不影响上皮细胞的效果,采用相差消化法、差速贴壁法去除成纤维细胞可获得纯度较高的结肠上皮细胞。


http://pro.biomart.cn/lab-web/method/34slmkego5qft.html


材料与仪器


含有双抗的 DMEM 培养基、5 g/L 胰蛋白酶,Buffer 溶液(5% RPMI1640 + 5% FBS + 10mM HEPES),消化液(DMEM 培养基溶解胶原酶 I 浓度为 0.1%,分散酶 II 浓度为 0.3%)


无菌剪刀、无菌镊子、100 μm 细胞过滤器、细胞培养瓶、细胞培养板;






步骤



1. C57BL/6 小鼠颈椎脱臼处死,喷适量酒精,滴加适量 Buffer 快速分离结肠;



2. 沿肠系膜剪开,DMEM 培养基清洗去除肠腔内容物;



3. 无菌剪刀将结肠组织剪成 1mm3 左右碎片;



4. 10 mL 0.1% 胶原酶 I 和 3% 分散酶 II 消化组织,37℃,摇床消化 25 min;



5. 吹打混匀,100 μm 细胞过滤器过滤,收集上清;



6. 相差消化法、差速贴壁法去除成纤维细胞;



7. 加入 1 mL 培养基重悬细胞,接种于培养瓶完全培养基中,37℃,5% CO2 细胞培养箱中培养;



8. 细胞长至培养瓶 80-90% 后用 5 g/L 的胰酶消化液消化,接种于细胞培养板。









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