实验目的

研究细胞的迁移能力，评估不同处理对细胞迁移的影响。

实验材料与试剂

细胞株：口腔上皮癌细胞株

培养板：6孔板

DMEM培养基、胰蛋白酶-EDTA溶液（用于细胞消化）、FBS（胎牛血清）、PBS缓冲液

移液枪头（用于划痕，建议10-20μl枪头）

成像仪/显微镜（用于细胞成像）

实验步骤

实验前准备

在6孔板背面使用水性笔画5-7相互平行的直线（便于划痕操作，以及观察视野时定位）

细胞培养

将待测细胞接种于6孔板中，在37°C、5% CO₂的培养箱中培养过夜。

细胞观察

使用成像仪/显微镜观察细胞，细胞融合度在80-90%，进行划痕效果最佳。

图1

划痕处理

使用移液枪头在细胞汇合的单层表面划出多条直线，模拟“伤口”。注意保持划痕一致，与水性笔画的线相互垂直，避免细胞过多脱落。

清洗细胞

使用PBS缓冲液轻轻清洗细胞1-2次，去除脱落的细胞碎片，之后换上无血清培养基。

成像记录

在0小时时，用成像仪/显微镜拍摄划痕区域的图像，记录初始的划痕宽度。

图2

图3

迁移监测

将细胞置于培养箱中培养。根据实验设计，若使用显微镜则需分别在不同时间点（如6小时、12小时、24小时等）观察并拍摄划痕区域的细胞迁移情况。每个时间点要保持相同的拍摄条件和位置。

若使用成像仪，选好点位，设置好拍摄间隔时间与循环数即可（建议间隔时间2h，循环数24）。

视频1

数据分析

若用显微镜，需要使用图像分析软件（如ImageJ）来测量不同时间点划痕的宽度，计算细胞迁移的距离或划痕闭合率。根据实验设计，评估不同处理条件下的细胞迁移情况。

若使用成像仪，通过STAT软件自动生成划痕曲线及相关数据：包括相关的划痕定量曲线，自动给出伤口汇合度，相对伤口密度，伤口宽度等定量数据。

图4 每1h拍摄一次后，通过成像仪得到的细胞生长曲线

还可搭载选配的划痕分析软件，得到细胞迁移（划痕实验）实验中自动生成划痕曲线及相关数据：包括相关的划痕定量曲线，伤口汇合度，相对伤口密度，伤口宽度等定量数据。

图5 划痕选配软件可以得到的更多更全面的定量数据

注意事项

划痕操作要轻柔均匀，避免对细胞造成过度损伤。

划痕后的清洗步骤要仔细，确保去除掉脱落的细胞碎片。

实验过程中尽量减少培养板的移动，防止细胞位置变化影响结果。

每个条件需至少重复3个孔，以确保数据的可靠性和重复性。

预期结果

未处理组的划痕会随时间逐渐愈合，细胞向划痕区域迁移，划痕宽度逐渐减小。

处理组则根据处理的不同，可能出现细胞迁移加快或减慢的现象。